畢業(yè)論文雙水楊醛乙二胺西佛堿鐵配合物與牛血清白蛋白相互作用模式的研究

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1、閩南師范大學(xué) 畢業(yè)論文 雙水楊醛乙二胺西佛堿鐵配合物與牛血清白蛋白相互作用模式的研究 Research the interactation mode between ferrous - BIS salicylidene ethylenediamine and BSA 姓 名： 學(xué) 號： 系 別： 化學(xué)與環(huán)境科學(xué)系 專 業(yè)： 應(yīng)用化學(xué) 年 級： 10級 指導(dǎo)老師： 2014年1月10

2、日 I 摘要 雙水楊醛乙二胺西佛堿和鐵（Ⅱ）-雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（配合物1）的合成，并對配合物1進行紅外表征。用熒光光譜及紫外吸收光譜方法，研究該配合物1與牛白蛋白（BSA）的相互作用。研究表明配合物1對BSA猝滅作用屬于靜態(tài)猝滅，根據(jù)Stern-Volmer 方程, 計算了配合物1與BSA 間的結(jié)合常數(shù)Kq，用Van.t Hoff方程計算了熱力學(xué)參數(shù)；乙醇和EDTA為探針以及透析法推測了配合物1-BSA復(fù)合物透析過程中生成新的物質(zhì)。 關(guān)鍵詞：雙水楊醛乙二胺西佛堿；亞鐵離子；熒光光譜；牛血清白蛋白；EDTA Abstract The Synthesis of

3、 BIS salicylidene ethylenediamine Schiff base and Fe(Ⅱ) - BIS salicylidene ethylenediamine Schiff base .And the structures of Fe(Ⅱ) - BIS salicylidene ethylenediamine Schiff base were confirmed by infrared. We reseached the interactation with the complexes and BSA by UV and molecular fluorescence a

4、nalysis .The study shows that the quenching effect on BSA belongs to static quenching.We calculated the binding constant Kq of the complexes and BSA according to the Stern - Volmer equation and calculate the thermodynamic parameters with the Van. T Hoff equation.We used Ethanol and EDTA as probe t

5、o speculate the new substances from the dialysis process . Key words: BIS salicylidene ethylenediamine Schiff Base; Fe(Ⅱ); fluorescence spectrum;BSA;EDTA 目 錄 中文摘要 I 英文摘要 I 前言 1 1 實驗部分 1 1.1儀器與試劑 1 1.2 亞鐵－雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（配合物1）的合成 1 1.3 配合物1與牛血清白蛋白(BSA)相互作用熒光測定 2 1.3.1 配合物1與BSA相互作用常溫熒光測定

6、 2 1.3.2配合物1與BSA相互作用變溫熒光測定 2 1.3.3配合物1與BSA相互作用同步熒光測定 2 1.4 配合物1與BSA相互作用紫外測定 2 1.5 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響測定 2 1.5.1 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的作用紫外測定 2 1.5.2 雙水楊醛乙二胺西佛堿與BSA相互作用的熒光測定 3 1.5.3 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的作用熒光測定 3 1.5.4 Fe(edta)配合物對雙水楊醛乙二胺西佛堿-BSA復(fù)合物的作用熒光測定 3 1.6 乙醇對配合物1-BSA復(fù)合物的作用熒光測定 3 1.7 采用透析法對

7、配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用結(jié)果的測定 3 2結(jié)果與討論 4 2.1亞鐵－雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物紅外光譜表征 4 2.2 配合物1與BSA相互作用的熒光分析 4 2.2.1 配合物1與BSA相互作用常溫熒光分析 4 2.2.2配合物1與BSA相互作用熒光猝滅方式分析 5 2.2.3用靜態(tài)猝滅法對配合物1與BSA的相互作用進行分析 6 2.2.4配合物1與BSA之間的作用力類型分析 8 2.2.5配合物1與BSA相互作用同步熒光分析 8 2.3 配合物1與BSA相互作用紫外表征 9 2.4 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響的分析 10 2.4.1 E

8、DTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響的熒光分析 10 2.4.2 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響的紫外分析 10 2.5 乙醇對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響的熒光分析 12 2.6 配合物1與BSA相互作用模式圖 12 2.7 采用透析法對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用結(jié)果的分析 13 2.7.1配合物1與BSA作用透析后產(chǎn)物紅外光譜表征 13 2.7.2透析法對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用結(jié)果的分析 14 3結(jié)論 15 參考文獻 16 致謝 18 前言 蛋白質(zhì)是生物體的重要組成部分，是生命活動的物質(zhì)基礎(chǔ)。血清白蛋白

9、常作為一種模型蛋白質(zhì)用于生物醫(yī)用材料研究領(lǐng)域[1 , 2] ，可與許多內(nèi)源及外源性化合物結(jié)合起到存儲與轉(zhuǎn)運作用[3 , 4] ，即在體內(nèi)起著酸度保持、金屬離子、氨基酸、脂肪酸、藥物等的貯存、運載等重要的作用[5]，是基礎(chǔ)科學(xué)研究中最常用的藥物靶蛋白之一[ 6 ] 。從不同角度研究以白蛋白為代表的蛋白質(zhì)與具有生物活性小分子之間的相互作用，已成為一個非?；钴S的研究課題[7]。牛血清白蛋白( BSA) 肽鏈含有582個氨基酸殘基，在λex = 280 nm 時，BSA 的內(nèi)源熒光主要來源于19個酪氨酸和2個色氨酸殘基。酪氨酸的熒光主要通過能量轉(zhuǎn)移給色氨酸而發(fā)出，2個色氨酸分別位于134位和212位，

10、其發(fā)射峰特征、能量轉(zhuǎn)移及熒光壽命等指標可以對蛋白質(zhì)分子中熒光生色基團的結(jié)構(gòu)及其所處的微環(huán)境提供有效的信息[8, 9]。 本文利用熒光光譜法和紫外吸收光譜法研究了鐵（Ⅱ）—雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（配合物1）與牛血清白蛋白（BSA）相互作用的機理；利用透析法以及乙醇、EDTA為探針推測配合物與BSA相互作用模式。 1 實驗部分 1.1 儀器和試劑 試劑：牛白蛋白(BSA) （生化試劑） 國藥集團化學(xué)試劑有限公司 水楊醛 （AR） 國藥集團化學(xué)試劑有限公司 乙二胺 （AR） 廣東汕頭市西隴化工廠

11、 六水合硫酸亞鐵銨 （AR） 廣東汕頭市西隴化工廠 EDTA （AR） 國藥集團化學(xué)試劑有限公司 乙醇 （AR） 西隴化工股份有限公司 儀器： LS-55 熒光分光光度計 （美國PE 公司） UV-2550紫外分光光度計 （Shimadzu公司） 1.2 亞鐵-雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（1）的合成 取乙二胺5.6mL和17mL水楊醛溶解于50mL甲醇中，在冷水浴中攪拌30min，靜置15min，減壓抽濾，用乙醇洗滌，在常溫下干燥6h，得亮黃色固體粉末，再取2

12、.5g固體用40mL乙醇重結(jié)晶、抽濾，在常溫下干燥4h，得黃色晶體即為雙水楊醛乙二胺西佛堿。取雙水楊醛乙二胺西佛堿1.000g溶解于40mL甲醇中，再加入硫酸亞鐵銨1.000g，回流1h，冷卻，過濾，干燥，得淡粉色固體即為Fe（Ⅱ）—雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（配合物1）。 1.3 配合物1與BSA相互作用熒光測定 1.3.1 配合物1與BSA相互作用常溫熒光測定 稱取0.048g 配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液，并加入不同體積的

13、配合物1溶液，定容。以λ=292nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍的熒光光譜。 1.3.2 配合物1與BSA相互作用變溫熒光測定 稱取0.048g配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液，并加入不同體積的配合物1溶液，定容。將該系列溶液分別于25,30,35和40℃下，以λ=290nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍內(nèi)的熒光光譜。 1.3.3 配合物1與BSA相互作用同步熒光測定 稱取0.049g配合物1溶解并定容于100m

14、L容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=7.0）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液，并加入不同體積的配合物1溶液，定容。以λ=292nm為激發(fā)波長，測定△λ=15nm和△λ=60nm時的同步熒光光譜。 1.4 配合物1與BSA相互作用紫外測定 稱取0.024g配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.9）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的配合物1溶液，并加入不同體積的BSA溶液，定容。以配合物1溶液為參比液，記錄

15、200~500nm范圍內(nèi)的紫外吸收光譜。 1.5 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響測定 1.5.1 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的作用紫外測定 稱取0.048g配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，稱取0.039gEDTA用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液和3.00mL配合物1溶液，再加入不同體積的EDTA溶液，定容。以配合物1與BSA混合液為參比液，記錄200~500nm范圍內(nèi)

16、的紫外吸收光譜。 1.5.2 雙水楊醛乙二胺西佛堿與BSA作用的熒光測定 稱取0.032g雙水楊醛乙二胺西佛堿溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液，并加入不同體積的雙水楊醛乙二胺西佛堿溶液，定容。以λ=280nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍的熒光光譜。 1.5.3 EDTA對配合物1- BSA復(fù)合物的相互作用的影響熒光測定 稱取0.048g配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，稱取0.039gEDTA用HAc-NaAc緩沖溶液（p

17、H=6.8）溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液和3.00mL配合物1溶液，再加入不同體積的EDTA溶液，定容。以λ=280nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍的熒光光譜。 1.5.4 Fe(edta)配合物對雙水楊醛乙二胺西佛堿- BSA復(fù)合物的作用熒光測定 稱取0.032g雙水楊醛乙二胺西佛堿溶解并定容于100mL容量瓶中，稱取0.016g六水合硫酸亞鐵銨和0.030gEDTA配制摩爾比為2:1的Fe(edta)配合物溶液，用HAc-N

18、aAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液和5.00mL雙水楊醛乙二胺西佛堿溶液，再加入不同體積的Fe(edta)配合物溶液，定容。以λ=280nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍的熒光光譜。 1.6 乙醇對配合物1-BSA復(fù)合物的作用熒光測定 稱取0.049g配合物1溶解并定容于100mL容量瓶中，用HAc-NaAc緩沖溶液（pH=6.8）配制溶度為110-4mol/L的BSA溶液，然后于一系列10.00mL的容量瓶中加入1.00mL的BSA溶液和3.00mL配合物1溶液，再加入不同體積

19、的乙醇溶液，定容。以λ=280nm為激發(fā)波長，記錄300~450nm范圍的熒光光譜。 1.7 采用透析法對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用影響的測定 稱取0.050g配合物1和0.10gBSA，加入30mL蒸餾水溶解。用透析袋透析且每隔2天換一次水，每次換水前取1mL透析袋內(nèi)的原液并稀釋25倍，以蒸餾水為參比，記錄200~500nm范圍內(nèi)的紫外吸收光譜。 2 結(jié)果與討論 2.1亞鐵－雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物紅外光譜表征 利用NicoLet360光譜儀對亞鐵－雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物（配合物1）進行紅外光譜表征，結(jié)果如圖1所示。 圖1 雙水楊醛乙二胺西佛堿及配合物1紅外光譜圖

20、 a：雙水楊醛乙二胺西佛堿；b：配合物1 如圖1所示，雙水楊醛乙二胺西佛堿（曲線a）及其配合物1（曲線b）。對比曲線a和曲線b，C-C振動由1498cm-1和1610 cm-1移動至1491 cm-1和1608 cm-1，變化不明顯，說明水楊醛的基本骨架未變；C-N伸縮振動由原來的1635 cm-1移動至1608 cm-1，向低波數(shù)移動了27 cm-1，說明N原子上的孤對電子可能與Fe(Ⅱ)發(fā)生配位作用；O-H在2500~3200cm-1出現(xiàn)寬而散的特征峰移動至3350cm-1左右，向高波數(shù)移動，說明O原子被Fe(Ⅱ)離子競爭走孤對電子。由此說明，F(xiàn)e(Ⅱ)與雙水楊醛乙二胺西佛堿作用生成新

21、的配合物。 2.2 配合物1與BSA相互作用的熒光表征 2.2.1 配合物1與BSA相互作用常溫熒光分析 固定BSA的濃度為110-4mol/L，改變配合物1的濃度，并以λex＝292 nm的激發(fā)波長分別激發(fā)BSA溶液及BSA與配合物1的混合溶液。然后分別記錄波長為300~450nm的熒光發(fā)射光譜，其熒光發(fā)射光譜的測定結(jié)果如圖2所示。 圖2 不同濃度配合物1對BSA溶液熒光光譜的影響 [a~f：C[配合物1]/(10-4mol/L )0，1.1，3.3，5.5，7.7，9.9] 當激發(fā)波長為292nm時，配合物1在300~450nm范圍內(nèi)無熒光發(fā)射，而BSA由于其本身的色氨酸

22、殘基和絡(luò)氨酸殘基而產(chǎn)生內(nèi)源熒光[10]。因此，固定BSA的濃度不變，依次加入不同濃度配合物1，隨著配合物濃度的逐漸增加，BSA在350nm附近的熒光發(fā)射峰強度有規(guī)律的減弱，其結(jié)果如圖2所示，該特征的出現(xiàn)初步表明配合物1與BSA發(fā)生了一定程度的作用。 2.2.2 配合物1與BSA相互作用熒光猝滅方式分析 熒光猝滅是猝滅劑與熒光體激發(fā)態(tài)分子之間的相互作用的結(jié)果，猝滅過程通常有動態(tài)和靜態(tài)猝滅之分，它們均遵從Stern-Volmer方程：F0/F=1+kqτ0CQ=1+ ksv CQ式中，F(xiàn)0和F分別為未加入猝滅劑時BSA的相對熒光強度；kq為雙分子猝滅過程的速率常數(shù)；τ0為無猝滅劑存在時熒光分子

23、的平均壽命，通常取值10-8s[11]；ksv 為Stern-Volmer猝滅常數(shù)，是雙分子猝滅速率常數(shù)與單分子衰變速率常數(shù)的比率；CQ為猝滅劑的摩爾濃度[12, 13]。 而區(qū)分動態(tài)猝滅與靜態(tài)猝滅的主要依據(jù)之一是：動態(tài)猝滅主要依賴于分子的擴散，增加溫度導(dǎo)致擴散速度加快，猝滅常數(shù)將隨著溫度的升高而增大；而靜態(tài)催滅，溫度升高，將導(dǎo)致配合物的穩(wěn)定性降低，靜態(tài)猝滅常數(shù)的值將隨著溫度的升高而減小。 因此，根據(jù)Stern-Volmer方程，取BSA與配合物1的混合體系在不同溫度時熒光發(fā)射光譜的350nm處的相對熒光強度為F，以（F0/F-1）與所加入的配合物1濃度c0作圖，得到牛血清蛋白的Stern

24、-Volmer猝滅曲線，其結(jié)果如圖3所示；由Stern-Volmer方程求的猝滅速率常數(shù)如表1所示。 圖3 配合物1-BSA在不同溫度時Stern-Volmer曲線 表1 配合物1-BSA在不同溫度的Stern-Volmer常數(shù) T/K Ksv/(Lmol-1) Kq/( Lmol-1s-1) R2 298 2.32104 2.321012 0.996 303 2.30104 2.301012 0.997 308 2.23104 2.231012 0.998 313 2.13104 2.131012 0.995 由圖3可以看出，在不同溫度時，配

25、合物1-BSA體系的Stern-Volmer曲線基本上都具有較好的線性關(guān)系；而且隨著溫度的升高，Stern-Volmer常數(shù)逐漸減小，該現(xiàn)象說明配合物1對BSA的熒光猝滅過程為靜態(tài)猝滅。另外，由于各類猝滅劑對生物大分子的最大動態(tài)猝滅常數(shù)為2.01010 Lmol-1s-1 [14]，而配合物1對BSA的熒光猝滅常數(shù)Kq約為2.241012 Lmol-1s-1，遠大于雙分子間最大動態(tài)猝滅常數(shù)，該結(jié)果也進一步說明配合物1對牛血清蛋白的猝滅過程為靜態(tài)猝滅。 2.2.3 用靜態(tài)猝滅法對配合物1與BSA的相互作用進行分析 在靜態(tài)猝滅過程中，熒光物質(zhì)與猝滅劑分子間的結(jié)合常數(shù)可根據(jù)熒光強度與猝滅劑濃度的

26、關(guān)系求出。設(shè)蛋白質(zhì)大分子有n個相同并且相互獨立的結(jié)合位置，則有： lg(F0/F-1)=lgK+nlgcQ 其中F0為未加入猝滅劑時BSA的熒光強度；F為加入猝滅劑后BSA的熒光強度；K為熒光體-猝滅劑的結(jié)合常數(shù)，c0為配合物的濃度[15]。在不同溫度下，將BSA與配合物1的混合體系的熒光發(fā)射光譜曲線的350nm處的F0及F代入上式，得到lg(F0/F-1)與lgc0的關(guān)系圖（如圖4），即求出在不同溫度下的配合物1與BSA得結(jié)合常數(shù)K，相關(guān)系數(shù)R2以及結(jié)合位點數(shù)n，如表2。 圖4 lg(F0/F-1)與lgc的關(guān)系曲線 表2 配合物1與BSA的結(jié)合常數(shù)k，R2及結(jié)合位點數(shù)n T

27、/K 方程 k/( Lmol-1) R2 n 298 lg(F0/F-1)=5.82+1.34x 6.61105 0.999 1.34 303 lg(F0/F-1)=5.68+1.31x 4.79105 0.999 1.31 308 lg(F0/F-1)=5.24+1.21x 1.74105 0.999 1.21 313 lg(F0/F-1)=5.19+1.20x 1.55105 0.998 1.20 如表2所示，配合物1與BSA相互作用的結(jié)合常數(shù)K和結(jié)合位點數(shù)n（平均值為1.26）均隨著溫度的

28、升高而逐漸降低，該結(jié)果表明一個配合物1分子與BSA分子中的一個位點進行相互作用，它們之間的結(jié)合常數(shù)K的平均值為3.67105 Lmol-1。而結(jié)合常數(shù)K的大小反映了配合物與BSA相互作用的難易程度，初步分析表明：當配合物1與BSA相互作用時，該配合物的空間構(gòu)位或位阻對結(jié)合常數(shù)的大小有一定程度的影響。 2.2.4 配合物1與BSA之間的作用力類型分析 有機小分子和蛋白質(zhì)等大分子之間主要是通過分子間的氫鍵，范德華力，靜電引力等分子間作用力進行相互作用，這些分子間的作用力在發(fā)生相互作用時，反應(yīng)前后體系的熱力學(xué)參數(shù)會發(fā)生一定程度的變化。因此，可以通過測定體系的熱力學(xué)參數(shù)的變化來判斷小分子與蛋白質(zhì)分

29、子鏈之間的主要作用力的類型[16]。表3的△H，△S以及△G的計算值是分別通過以下3個方程計算所得（其中由于溫度變化不大，體系的焓變看成一個常數(shù)）。 lnk=-△rH m? / (RT)+C △G=-RTlnk △G=△H-T△S Ross[16]與Mohammed[17]等根據(jù)大量的實驗結(jié)果總結(jié)出判斷生物大分子與小分子結(jié)合性質(zhì)的熱力學(xué)規(guī)律，即：△S＞0可能是疏水和靜電作用力；△S＜0可能為氫鍵和范德華力；△H＞0，△S＞0為典型的疏水作用力；△H≈0或者較小，△S＞0為靜電作用力；△H＜0，△S＜0為氫鍵和范德華力。 表3 配合物1與BSA相互作用時的熱力學(xué)參數(shù)的計算 T/K

30、K/( Lmol-1) △H/(kJmol-1) △S/(JK-1) △G/(kJmol-1) 298 6.61105 -83.28 -168.04 -33.20 303 4.79105 -83.28 -166.10 -32.95 308 1.74105 -83.28 -170.07 -30.90 313 1.55105 -83.28 -166.71 -31.10 從表3數(shù)據(jù)中可以看出：配合物1與BSA間相互作用時，體系的△H＜0，△S＜0，該結(jié)果表明配合物1與BSA間相互作用時的主要作用力是氫鍵和范德華力。 2.2.5 配合物1與BSA相互作

31、用同步熒光分析 固定激發(fā)波長和發(fā)射波長的間距△λ，同步掃描激發(fā)和發(fā)射單色器可得同步熒光光譜，這種光譜已被用于蛋白質(zhì)構(gòu)象變化的分析[18-20]。而蛋白質(zhì)的熒光主要來于色氨酸、絡(luò)氨酸，所以一般通過對色氨酸或者絡(luò)氨酸的同步熒光的測定，探討色氨酸或絡(luò)氨酸的構(gòu)象或周圍環(huán)境是否發(fā)生變化[21]。圖3分別為△λ=15nm與△λ=60nm時，配合物1與BSA相互作用時的同步熒光的測定結(jié)果。 圖5 配合物1與BSA相互作用時的同步熒光光譜 A：△λ=15nm；B：△λ=60nm [a~f：C[配合物1]/(10-4mol/L )：0，1.1，3.3，5.5，7.7，9.9] 保持BSA的濃度為1

32、10-4mol/L不變，逐漸增加配合物1的濃度，隨著配合物濃度的增加，體系在292nm附近的同步熒光光譜強度均逐漸降低；在△λ=60nm的同步光譜中其最大發(fā)射波長有一定的紅移，在△λ=15nm的同步熒光光譜中，其最大發(fā)射波長沒有明顯變化。該結(jié)果表明配合物1與BSA相互作用時，主要通過改變牛血清蛋白中的絡(luò)氨酸殘基的構(gòu)象或周圍環(huán)境，而對色氨酸殘基的構(gòu)象或其周圍環(huán)境沒有明顯的影響。 2.3 配合物1與BSA相互作用紫外表征 固定配合物1的濃度為5.710-4mol/L，改變BSA的濃度，并以配合物1為參比液，測定配合物1與BSA的混合溶液。然后分別記錄波長為240~400nm的紫外吸收光譜，其紫

33、外吸收光譜的測定結(jié)果如圖6所示。 圖6 不同濃度BSA對配合物1溶液紫外光譜的影響 [a~e：C[ BSA]/( 10-5 mol/L )1.0，2.0，3.0，4.0，5.0] 配合物1在250~320nm范圍內(nèi)基本不發(fā)生紫外吸收。由圖6可見，BSA在280nm處有一強吸收峰，是其肽鏈上的色氨酸和絡(luò)氨酸的苯雜環(huán)π-π*躍遷引起的[6]。隨著BSA濃度增大，在280nm的吸收峰逐漸增強，且峰位由280nm藍移到278nm，說明配合物1與BSA發(fā)生作用。 2.4 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響分析 2.4.1 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響紫外分

34、析 配合物1-BSA復(fù)合物加入EDTA后紫外吸收光譜如圖7所示。 圖7 不同濃度EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響紫外光譜圖 [a~e:C[EDTA]/( 10-5mol/L) 1.4，4.2，5.6，8.4，42.0] EDTA在波長為200~300nm基本不發(fā)生紫外吸收。圖7可見在260nm左右有強吸收峰且峰發(fā)生藍移現(xiàn)象，表明EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用有影響。 2.4.2 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用的影響熒光分析 有機小分子和蛋白質(zhì)等生物大分子之間主要通過分子間的氫鍵，范德華力，靜電引力等分子間作用力進行相互作用。由2.2.4

35、可知，配合物1與BSA之間是通過分子間氫鍵和范德華力進行相互作用，當加入其他的物質(zhì)時會與BSA或配合物1相互作用，從而導(dǎo)致熒光強度發(fā)生變化。如圖8~10分別為雙水楊醛乙二胺西佛堿與BSA作用熒光光譜圖，F(xiàn)e(edta)配合物對雙水楊醛乙二胺西佛堿-BSA影響熒光光譜圖和EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互影響的熒光光譜圖。 圖8 雙水楊醛乙二胺西佛堿與BSA作用熒光光譜圖 圖9 Fe(edta)配合物對雙水楊醛乙二胺西佛堿-BSA影響熒光光譜圖 圖10 EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物的相互影響的熒光光譜圖 當激發(fā)波長為280nm時，雙水楊醛乙二胺西佛堿，配合物1與EDT

36、A在300~450nm基本不發(fā)生熒光發(fā)射。由Stern-Volmer方程可得，圖8和9猝滅常數(shù)分別為1.181011Lmol-1s-1，3.301011Lmol-1s-1。由2.2.1可知，配合物1對BSA的猝滅常數(shù)為2.371011 Lmol-1s-1。由此得：雙水楊醛乙二胺西佛堿對BSA猝滅常數(shù)與Fe(edta)配合物對雙水楊醛乙二胺西佛堿-BSA猝滅常數(shù)合為4.481011＞2.371011 Lmol-1s-1，因此可知EDTA對配合物1-BSA復(fù)合物起到進一步的猝滅作用，所以隨著加入EDTA溶度的增大熒光強度逐漸減弱，如圖10所示。 2.5 乙醇對配合物1與牛血清蛋白體系作用熒光分析

37、 固定牛血清蛋白的濃度為110-4mol/L和配合物1的濃度3.610-4mol/L，改變乙醇的濃度，并以λ=280nm的激發(fā)波長分別激發(fā)BSA-配合物1溶液及BSA-配合物1與EDTA的混合溶液。然后分別記錄波長為300~450nm的熒光發(fā)射光譜，其熒光發(fā)射光譜的測定結(jié)果如圖11所示。 圖11 不同濃度乙醇對配合物1-BSA復(fù)合物的影響熒光光譜圖 當激發(fā)波長為280nm時，乙醇在300~450nm范圍內(nèi)無熒光發(fā)射，而BSA由于其本身的色氨酸殘基和絡(luò)氨酸殘基而產(chǎn)生內(nèi)源熒光[10]。因此，固定BSA的濃度不變，依次加入不同濃度乙醇，隨著溶劑極性的降低，BSA在350nm附近有強的熒光發(fā)

38、射峰但是規(guī)律不明顯，其結(jié)果如圖11所示。該特征表明溶劑的極性對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用基本沒有影響。 2.6 配合物1與BSA相互作用模式圖 圖12 配合物1與BSA相互作用模式圖 2.7 采用透析法對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用結(jié)果的分析 2.7.1 配合物1與蛋白質(zhì)作用透析后產(chǎn)物紅外光譜表征 利用NicoLet360光譜儀對配合物1及配合物1-BSA透析產(chǎn)物進行紅外光譜表征，結(jié)果如圖12所示。 圖13 配合物1及配合物1-BSA透析產(chǎn)物紅外光譜圖 a：配合物1；b：配合物1-BSA透析后析出的產(chǎn)物 圖14 牛血清白蛋白紅外光譜圖 如圖13、14所示，

39、配合物1（曲線a）、配合物1-BSA透析產(chǎn)物（曲線b）和牛血清白蛋白曲線。由曲線a和牛血清白蛋白與曲線b對比可知，曲線b在755.96cm-1，1245.79cm-1和1608.34cm-1處均沒有強的吸收峰，兩圖的紅外特征說明配合物1-BSA復(fù)合物出先與配合物1和BSA不同的結(jié)構(gòu)，據(jù)此推測配合物1-BSA經(jīng)透析后可能生成新的物質(zhì)。 2.7.2 透析法對配合物1-BSA復(fù)合物的相互作用結(jié)果的分析 用透析袋透析且每隔2天換一次水，每次換水前取1mL透析袋內(nèi)的原液并稀釋25倍，以蒸餾水為參比，記錄200~500nm范圍內(nèi)的紫外吸收光譜，其紫外吸收光譜測定結(jié)果如圖15所示。 圖15 不同

40、時間配合物1-BSA復(fù)合物透析紫外吸收光譜圖 圖15可看出，隨著透析天數(shù)延長，配合物1-BSA復(fù)合物溶液的紫外吸收逐漸增強，透析至9天后紫外吸收趨于穩(wěn)定。結(jié)合2.7.1紅外光譜圖初步推測：配合物1-BSA復(fù)合物在透析中紫外吸收不斷增強可能是因為生成新的物質(zhì)。 3 結(jié)論 本文合成和表征鐵（Ⅱ）-雙水楊醛乙二胺西佛堿配合物，配合物1對BSA熒光猝滅為靜態(tài)猝滅過程；它們兩者之間主要通過范德華力或分子間氫鍵的作用力形式，通過改變BSA中絡(luò)氨酸殘基的構(gòu)象進行相互作用，其結(jié)合常數(shù)的平均值為3.67105 Lmol-1。對配合物1與BSA相互作用時作用模式的探討。采用透析法研究表明配合物1-BSA復(fù)合

41、物在透析過程中可能生成新物質(zhì)。 參考文獻 [1] 鄭彩虹, 梁文權(quán), 虞和永.海藻酸-殼聚糖-聚乳酸羥乙醇酸復(fù)合微球的制備及 其對蛋白釋放的調(diào)節(jié)[J]. 藥學(xué)學(xué)報, 2005,40(2): 182-186 [2] Chaudhuri D, Horrocks WD Jr , Amburgey J G,et al. Characterization of lanthanide ion binding to the EF-hand protein S100 beta by luminescence s

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48、ysis [J]. Proc. AnaL. Div.Chem. Soc., 1979, 16 : 203-208 致 謝 在論文完成之際，我回顧了一年來自己所走的路，我特別感謝的是林老師，他在我撰寫論文過程中給了我很大的幫助，從選題、構(gòu)思、實驗以及最后的定稿，林老師都不辭辛苦指導(dǎo)我們，幫我們查資料。林老師的敬業(yè)精神和認真嚴謹?shù)膽B(tài)度都讓我受益匪淺，在此，我深深地表示感謝，感謝您的悉心教導(dǎo)。 同時，在完成論文的過程中也得到過其他老師和同學(xué)的幫助，在此，我也深表感謝。 最后，向在百忙中抽出時間對本文進行評審并提出寶貴意見的各位專家表示衷心地感謝！ 19